Использование медетомидина (Медитин®) при анестезии диких и зоопарковых животных

УДК 599.59.002.084.009

¹Альшинецкий М.В., ²Эрнандес-Бланко Х.А., ³Блидченко Е.Ю., ²Сипко Т.П., ²Чистополова М.Д., ⁴Гончарук М.С., ^2,6Ячменникова А.А., ⁵Петрова О.В.

¹главный ветеринарный врач ГБУ «Московский зоопарк», 123242 г. Москва, Б. Грузинская, дом. 1 +7 (495) 605-73-39, электронная почта: m.alshinetskiy@moscowzoo.ru,

²к.б.н., с.н.с. лаборатории поведения и поведенческой экологии млекопитающих, Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова, РАН, 119071, г. Москва, Ленинский пр-т, 33, ком. 19, j.a.hernandez.blanco@gmail.com, felis.melanes@yandex.ru;

³ветеринарный врач МРОО «Центр реабилитации и реинтродукции тигров и других редких видов животных», 690089 Приморский край, г. Владивосток, ул. Героев Варяга 12; avulpes@yandex.ru;

⁴ ветеринарный врач Лондонского зоологического общества, представительство Россия, mikhail.goncharuk84@gmail.com

⁵ветеринарный врач, к.в.н, ООО «АПИ-САН», 7 (495) 580-77-13, доб. 1222, info@apicenna.ru, 143985 Московская обл., г. Балашиха, Полтавское шоссе, владение 4, адрес для корреспонденции: 143980, Московская обл., г. Железнодорожный, ул. Пролетарская, д.2, а/я 599.

⁶н.с. ФГБУ «Кроноцкий заповедник»

Ключевые слова: иммобилизация, анестезия, седация, медетимидин, атипамезол, агонист альфа2-адренорецепторов, дикие животные.

Keywords: immobilization, anesthesia, sedation, medetomidine, atipamezole, alpha 2 -adrenoreceptor agonist, wild animals.

РЕФЕРАТ

Медетомидин, как альфа2-агонист, включен в официальные рекомендации по применению для иммобилизации и анестезии у диких видов млекопитающих животных и птиц в Европейских странах, США и Канаде. Однако, в России данное соединение не прошло официально зарегистрированную апробацию в качестве такового средства у диких видов животных. Проведенное исследование показало возможность применения медетомидина, а также его безопасность у диких и зоопарковых животных во время анестезии. Установлены эффективные дозы медетомидина в расчете на действующее вещество – 20 - 120 мкг/кг в зависимости от вида животного, которые оказались в целом сопоставимы с международными рекомендациями. Первые признаки седации, на фоне применения медетомидина наступали через 6 – 25 минут, а восстановление у животных после введения антипамезола наблюдали через 5 – 45 минут после его введения в зависимости от вида животного. Во время проведения иммобилизации все животные хорошо переносили индукцию, летальных исходов не наблюдали.

ВВЕДЕНИЕ

Отлов и последующая иммобилизация диких и зоопарковых животных – важнейшая часть научных исследований, проводимых для изучения видовых особенностей миграции животных, для оказания срочной ветеринарной помощи диким животным и обеспечения их безопасной транспортировки и т.д. Для химической иммобилизации во всем мире традиционно приняты стандартизированные анестезиологические протоколы с учетом уровня фармобеспечения, целей и задач проводимой иммобилизации, от наличия противопоказаний и индивидуальных особенностей животного используются анестетики как в комбинации, так и в монорежиме [1, 13, 30]. Основной принцип применения анестетиков у диких животных – это доставление им в процессе манипуляций как можно меньше страданий и боли. Для реализации данного принципа применяются средства с седативным и миорелаксирующим эффектом. Эту нишу уже давно и успешно занимают альфа2-агонисты (ксилазин, медетомидин, детомидин и дексмедетомидин), причем гораздо чаще в рекомендациях по анестезии у диких видов можно встретить схемы с применением дексмедетомидина и медетомидина [10-12, 12, 24, 29]. Причем последний используется на практике гораздо чаще для различных видов диких млекопитающих, рептилий и птиц, что возможно связано с механизмом действия и видовой специфичностью [31], а также с доступностью для использования на практике. Более того, использование альфа2-агонистов позволяет сократить дозировку вводимых опиойдных анальгетиков, диссоциативных анестетиков, ингаляционных анестетиков (изофлюран, севафлюран и др.) при их применении во время анестезии и иммобилизации [3, 10-12, 30]. Исследователи [22, 23, 28, 30] отмечали, что для протокола медетомидин/тилетамин+золазепам характерны быстрое наступление индукции, хорошая миорелаксация, и сам протокол особенно удобен для иммобилизации животных, массу тела которых трудно установить точно в полевых условиях. Анестезия диких свободноживущих и зоопарковых видов подчиняется тем же принципам, что и анестезия мелких домашних животных в интраоперацинных условиях [8], поэтому мониторинг животных необходим даже в полевых условиях [22, 23, 28, 30]. Среди различных диких млекопитающих встречаются отдельные виды, у которых опытным путем установлен и описан более высокий риск развития тех или иных побочных явлений на фоне анестезии, чем у других. Так, например, среди многочисленного семейства кошачьих в отношении тигров был ряд сообщений о развитии судорог, у животных наблюдались эпизоды апноэ [9, 29]. При этом исследователи [16, 19, 29] настоятельно не рекомендуют использовать у диких кошачьих только альфа2-агонисты без комбинации с анальгетиками, так как по их наблюдениям, существует большой риск проявления неожиданного возбуждения животного до того, как все процедуры будут закончены. У диких парнокопытных на фоне иммобилизации и анестезии у [7, 15, 19] сообщалось о случаях развития гипоксемии и гипертермии. Данные сообщения о нежелательных эффектах во время применения альфа2-агонистов вовсе не означают, что следует прекратить их применение у парнокопытных или у других видов. Также у парнокопытных видов следует учитывать руминацию и профилактировать развитие тимпании. В таких случаях рекомендуется фиксацию животного проводить в грудном положении, а при серьезной тимпании вводить руминаторную трубку, но наиболее целесообразно в такой ситуации все же будет завершить все процедуры и ввести атипамезол [16]. Иммобилизация диких псовых не отличается от анестезии домашних собак, при ее проведении у животных необходимо контролировать терморегуляцию. При отлове фиксировать животных следует аккуратно. Так как часто во время иммобилизации требуется забор крови, то с учетом того, что медетомидин вызывает вазоконстрикцию, венепункцию у иммобилизиованных животных проводят в течение первых 15-20 минут после индукции, потому что дальнейший вазоспазм делает эти процедуры более сложными позже [24]. При иммобилизации медведей глубину анестезии следует тщательно контролировать, поскольку некоторые комбинации анестетиков по сообщению [8, 15] оказались не надежными именно у этих животных, наблюдались случаи внезапного пробуждения, особенно на фоне введения ксилазин/кетамин и медетомидин/кетамин. При проведении иммобилизации медведей следует избегать шума, дополнительных перемещений. Во время иммобилизации медведей важно контролировать у животных функции сердечно-сосудистой системы из-за рисков развития брадикардии с падением частоты сердечных сокращений до 30 - 40 ударов в минуту [6]. При иммобилизации куньих сообщается о возникновении у животных гипертермии, вызванной чрезмерным движением при отлове [20].

Зачастую, риски развития нежелательных клинических эффектов применения альфа2-агонистов и других анестетиков, прекрасным образом, нивелируются и управляются путем сокращения времени воздействия стресса на животных во время погони и преследования, а во время проведения манипуляций обязателен контроль показателей жизнеобеспечения. Принимая во внимание вышеперечисленные видовые особенности применение альфа2-агонистов можно сделать максимально безопасным и эффективным у животных.

В связи с ростом научно-практического интереса во всем мире к использованию альфа2-агонистов у диких видов млекопитающих, была проведена работа по изучению анальгезирующей и седативной эффективности медетомидина на примере препарата с торговым наименованием Медитин^® для иммобилизации диких и зоопарковых животных. Во время исследования требовалось оценить частоту возможных нежелательных реакций, выявить различные особенности взаимодействия медетомидина с препаратами других фармацевтических групп, определить эффективные его дозы для различных видов диких и зоопарковых млекопитающих.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Полевыми площадками для изучения эффективности медетомидина гидрохлорида были ГАУ Московский зоопарк (г. Москва, ул. Большая Грузинская, д. 1; Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова Российской академии наук (ИПЭЭ РАН) (экспедиции заповедник Черные земли, Республика Калмыкия, Смоленская область, национальный парк «Смоленское подворье», МПОО «Центр ТИГР», Приморский край, с. Алексеевка, национальный парк «Земля леопарда», Хасанский р-он, Ямало-Ненецкий АО, Приуральский район, Природный парк «Приуральский», Горно-Хадатинский участок); МУП «Новосибирский зоопарк» (г. Новосибирск, ул. Тимирязева 71\1), БФ Защиты Животных «Бим» (Московская обл., Орехово-Зуевский район, д. Хотеичи) в период с 02.2016 по 07.2018 год. В качестве опытных образцов исследователям были переданы флаконы препарата Медитин^® (организация-разработчик: ООО «АПИ-САН», РФ, г. Москва, ул. Академика Арцимовича, д. 3, корп. 1., кв. 222.) для использования во время иммобилизации животных. В качестве реверсивного средства для отмены клинических эффектов альфа2-агонистов использовался антипамезол.

Для работы с дикими видами требуется специальное снаряжение и оборудование, обеспечивающее обездвиживание и седацию животных. Для отлова животных были использованы ногозахватывающие петли марки «Aldrige» или аналогичные. Инъекции препаратов для иммобилизации производились с помощью инъектора «Dan-Inject International, Гельсекирхен, Германия» (Дания) или аналогичного, пневматического метателя, заряженного многоразовыми инъекционными шприцами-дротиками. Прицел способствует более высокой точности стрельбы из любой точки диапазона действия устройства на расстоянии 100 м. Применение метода дистанционного инъецирования при химической иммобилизации одобрено у диких и зоопарковых животных [34] Для инъекций использовали шприцы-инъекторы в зависимости от типа применяемого инъектора. Для уменьшения беспокойства животного соблюдали временной интервал между процессом отлова и химической иммобилизацией, который должен составлять не более 4 часов. При использовании дистанционного инъецирования шприц-дротик направлялся в область задней конечности. После того, как животное принимало лежачее положение, к нему подходили с соблюдением мер предосторожности. Дополнительную фиксацию конечностей проводили у некоторых животных. Животным накрывали глаза и уши непрозрачной тканью для предотвращения воздействие раздражителей извне. После подхода к животному первоначально выполняли извлечение шприца-дротика с целью определения поступления препарата животному.

В исследование включены виды животных, относящиеся к семействам: куньи, кошачьи, медвежьи, псовые, парнокопытные; в выборку вошли, как самцы, так и самки. Работу проводили как с животными из дикой природы, так и с содержащимися в неволе (зоопарки, центры реабилитации). Виды: азиатский барсук (Meles leucurus), обыкновенная лисица (Vulpes vulpes), серый волк (Canis lupus), зубр (Bison bonasus), овцебык (Ovibos moschatus), бурый (Ursus arctos), белый (Ursus maritimus) и гималайский медведи (Ursus thibetanus), марал (Cervus elaphus), амурский тигр (Panthera tigris altaica), африканский лев (Panthera leo), дагестанский тур (Capra cylindricornis), винторогий козел (Capra falconeri), голубой баран (Pseudois nayaur), як (Bos mutus). Возраст животных варьировал от 8 мес. до 12 лет. Вес составлял в среднем от 4 до 500 кг. Общее количество животных, которым применяли анестезиологический протокол с медетомидином гидрохлоридом составило 77 особи. Данная выборка обусловлена конкретной задачей и целью проведения иммобилизации. Клинический осмотр животных проводили, используя общие рекомендации [2, 13, 26], осмотр состояния кожно-волосяного покрова, слизистых оболочек, подкожной клетчатки, опорно-двигательного аппарата. Каждое животное в исследовании было учтено при помощи бирки или при помощи ошейника или микрочипа. Из исследования были удалены животные с клиническими признаками инфекционных или незаразных заболеваний (за исключением хирургической патологии), истощенные и ослабленные животные.

Клиническую оценку применения медетомидина при иммобилизации и анестезии у диких животных проводили с учетом анализа следующих параметров: наличие высокого индекса безопасности (т.е. случайное превышение дозы альфа2-агонсита не должны были вызывать необратимых побочных эффектов); иммобилизация животных должна наступать после введения малых и сверхмалых количеств препарата в мкг действующего вещества или не более 10 мг/кг; быстрое, не более чем через 20-30 мин развитие эффекта; физическая стойкость при транспортировке и хранении в полевых условиях; отсутствие пред- и постиммобилизационного возбуждения; обратимость вегетативных нарушений; отсутствие необходимости сложных методов лечения для устранения нежелательных эффектов; химическая совместимость с другими веществами, применяемые для премедикации и анестезии; длительность действия не менее 15-30 мин; малая видовая избирательность действия; большая терапевтическая широта; краткий период преддействия; стойкость по отношению к внешним реагентам; безвредность, как для человека, так и для животных.

Для расчета дозы анестетиков учитывают массу животного, так как измерение веса для диких видов животных перед иммобилизацией составляет некоторые технические сложности и может быть нецелесообразным, так как вызывает дополнительное беспокойство и увеличит риск травматизма, то данный параметр берут из истории болезни животного или карточки, или рассчитывается по среднему значению для вида). В состоянии седации и миорелаксации животных при необходимости дозу анестетиков после измерения веса корректировали. Учитывали возраст животного (чем моложе животное, тем доза бралась ближе к верхней рекомендованной границе). После проведения иммобилизации на основании визуальных методов оценки двигательной активности животного вели подсчет времени индукции (интервал между временем введения препарата и, когда животное приняло горизонтальное положение и не реагировало на раздражитель), продолжительности периода обездвиживания, возврата к исходному клиническому состоянию после введения антидота, когда животные могли стоять и передвигаться (время реверса). Глубина седации оценена была в баллах от 1-10. Глубина в 10 баллов означала хорошую релаксацию мышц, отсутствие реакции на манипуляции (взятие крови, хирургические и другие исследования, проводимые у животного). Глубина в 6-8 баллов означала, что мышечная реакция на некоторые процедуры сохранилась, при этом животное находилось в расслабленном состоянии. Глубина менее 6 баллов (слабая седация) означала некоторое успокоение животного, при сохранении попыток его бороться. Степень анальгезии была оценена также в баллах от 1 до 10 (по отсутствию проявления мышечной реакции на болезненные процедуры – взятие крови, хирургические манипуляции). Контроль глубины анестезии подтверждали отсутствием спонтанного моргания, пальпебрального рефлекса, жевания, движения лап. Для оценки эффективности и безопасности химической иммобилизации у диких животных, а также с целью мониторинга клинического состояния во время процедуры при помощи инструментальных методов оценивали изменения функций сердечно-сосудистой и дыхательной систем. Проводили измерение параметров жизнеобеспечения - ЧДД д/д мин, ЧСС уд. мин, SpO₂ % (насыщение крови кислородом), температуры тела, величины СНК (скорость наполнения капилляров) регулярно каждые 15 минут от начала индукции. О гипертермии судили, если при измерении температуры получали результаты ˃ 40°С, о гипотермии, соответственно <37°С. Физиологический мониторинг за состоянием животного проводили при помощи портативного цифрового пульсоксиметра Dixion Storm 5000 VET, прикрепленного к языку животного [2]. При мониторинге уровня SpO₂% у животных обращали внимание на снижение этого показателя до 70 -80% [23, 28].

Статистическую обработку данных проводили по методике Стьюдента с применением пакета программного обеспечения Microsoft Office Excel 2013. Во всех процедурах статистического анализа критический уровень значимости p принимался равным 0,05.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Для химической иммобилизации животных для обеспечения безопасной транспортировки и перемещения на другую площадку (или в другой вольер) выполнялась непродолжительная по времени анестезия животных в 6/5 баллов. При выполнении рутинных процедур (осмотр, взятие биоматериала, измерение животного), для оказания животному ветеринарной помощи (орхиэктомия, лечение травм конечностей и мягких тканей), установка спутниковой системы слежения (GPS-ошейники) на животных для изучения миграции видов, степень анальгезии и седации обеспечивалась в 8-10 балла. При достижении индукции звери лежали спокойно на боку, мышцы шеи были расслаблены, из ротовой полости шло небольшое слюнотечение (у псовых). При приближении человека животное не в состоянии было приподнять голову, у кошачьих после прикосновения к уху не отмечалось его шевеления в ответ на стимул [26]. Мышцы живота были расслаблены, уменьшен тонус межреберной мускулатуры и диафрагмы, слизистая ротовой полости, конъюнктивы либо бледно-розового цвета, либо пигментированы. При осмотре все животные были нормальной упитанности, имели крепкое телосложение, волосяной покров был естественного природного окраса, без признаков патологических изменений, волос прочно удерживался в коже, тургор кожи был сохранен. Целостность кожного покрова была в отдельных участках нарушена в виде потертостей. Толщина кожи у исследованных животных составляла от 0,2 (min) до 1,5 (max) см. Кожа имела запах специфический для вида. Развитие подкожной клетчатки было удовлетворительным, перед зимней спячкой медведи и барсуки были весьма упитанными. Кожа имела специфический запах. Развитие подкожной клетчатки было удовлетворительным. Отеки на голове, в области живота и конечностях не отмечались. Слизистые оболочки конъюнктивы, ротовой полости имели бледно-розовый цвет, были умеренно влажными, целостность их была не нарушена. После завершения процедур и введения атипамезола, от животного удалялись на расстояние около 15 - 60 мин и ожидали пробуждения и полного восстановления рефлексов. Период полного восстановления после седации занял не более 3 часов (180 мин), данный параметр (реверсивность) вариабелен и зависел от вида, возраста, индивидуальных особенностей животного.

Во время восстановления животного из анестезии увеличивалась частота и амплитуда дыхательных движений за счет активизации межреберных мышц живота. Животные становились способными самостоятельно лечь на грудь и удерживать голову, а когда действие препарата заканчивалось – вставали и могли свободно передвигаться.

Для обеспечения анестезии потребовались следующие дозы медетомидина у различных видов животных (Таблица 1).

Таблица 1. Рассчитанные дозы медетомидина мкг/кг по ДВ и препарату в мл/10 кг массы тела у животных (M ± m)

Таким образом, в нашем исследовании расхождения по дозировке медетомидина для химической иммобилизации с предложенными в научных рекомендациях были не значительны. Следует также пояснить, что для создания глубокой седации может потребоваться большая доза медетомидина. Дозы рассчитаны исходя из комбинированного применения с диссоциативными анестетиками – смесью золазепам+тилетамин, в качестве компонента премедикации.

Во время проведения иммобилизации и анестезии наблюдения за животными после инъекции позволили оценить время наступления эффектов, продолжительность, а также реверсивность (Таблица 2).

Таблица 2. Параметры клинической эффективности анестезии при применении медетомидина

Во время отслеживания состояния животных после применения анестетиков при применении медетомидина термометрия животных показала, что средняя температура для различных видов животных во время иммобилизации не претерпевала клинически значимых колебаний, хотя у отдельных особей (псовые) ректальная температура тела достигала 40°С и более в первые минуты проведения анестезии. Динамика изменений температур направлена в сторону плавного снижения ее до физиологических значений, что свидетельствует о восстановлении нормальной терморегуляции. Изменение температуры у одних животных происходили в сторону повышения значений (как, например, у псовых и парнокопытных), то у других (кошачьих и куньих), наоборот, на фоне седации происходило незначительное снижение показателя т.е. наблюдалась вариабельность.

Показатель насыщения крови кислородом (SpO₂) у опытных животных в ходе проведения исследований снижался незначительно. У крупных парнокопытных с 15 - 30 минуту показатель снизился на 5,7%, а к 45 минутам происходило его восстановление, у серых волков – снижение наблюдалось в первые 15 минут на 16%, у гималайских медведей к 30 минуте – на 7,5%, у белых медведей на 6,5% (по отношению к показателям, снятым в первые 15 минут).

При применении медетомидина в комбинации со смесью золазепам/тилетамин у животных в первые 15- 30 минут снижается количество производимых дыхательных движений, но состояние выраженной (угрожающей) гипоксемии не наблюдалось. Клинически значимым было снижение оксигенации у бурых медведей, что визуально сочеталось с развитием цианоза видимых слизистых оболочек. Нарушение терморегуляции в сторону развития как гипер-, так и гипотермии встречали у представителей псовых, у куньих – возбуждение на выходе из анестезии. У парнокопытных (у крупных и мелких видов) никаких нежелательных реакций во время, и после иммобилизации не отмечали.

При оценке неблагоприятных явлений в целом, при расчете на общее число животных в исследовании, количество случаев было не значительным, угрожающих жизни состояний у животных, которым применяли протокол с медетомидином не выявили (за исключением 1 амурского тигра с обратимым апноэ). Как уже было сказано в начале, тигры предрасположены к нежелательным реакциям при анестезии, в нашем исследовании мы также столкнулись со схожими симптомами у 1 самца.

ВЫВОД

При применении образцов медетомидина в качестве компонента для седации, анальгезии и миорелаксации у диких видов животных были установлены его эффективные и безопасные дозы в расчете на действующее вещество – 20 - 120 мкг/кг в зависимости от целей применения. Первые признаки седации наступали через 6 – 25 минут, что позволило провести необходимые исследования у животных. Первые признаки восстановления у животных после введения антипамезола наступали через 5 – 45 минут после его введения в зависимости от вида. Во время проведения иммобилизации все животные хорошо переносили индукцию, летальных исходов не было, все описанные выше нежелательные эффекты легко купировались, животные быстро восстанавливались. Протокол, включающий альфа2-агонист медетомидин отвечает всем современным требованиям к препаратам для химической иммобилизации и анестезии, является безопасным для животных в рекомендуемых дозах. Медетомидин прекрасно сочетается с другими средствами, применяемыми для нейролептанальгезии, и поэтому может быть рекомендован для применения у диких и зоопарковых животных.

ЛИТЕРАТУРА

1. Актуальные ветеринарные проблемы в зоопарках / Мат. Международ. семинара. Москва: 20-26 октября 2008 г. // Межвед. сб. науч. и науч.- метод. тр. – М.: Московский зоопарк, 2009, 114 с.
2. Машкин В. И. Методы изучения охотничьих и охраняемых животных в полевых условиях: учеб. пособ. -- С-Пб.: Лань, 2013.-- с. ил. (Учебники для вузов. Специальная литература).
3. Морозов М.А., Новиков Б.В., Царев С.А. Применение золетила (zoletil) при обездвиживании лесного северного оленя (Rangifer tarandus fennicus) в Карелии // Вестник охотоведения. – 2010. – Т. 7, №2– С.388–390.
4. Burroughs R. E. J. 1993. Chemical capture of antelope. In The capture and care manual, A. A. McKienzie (ed.). Wildlife Decision Support Services, Lynnwood Ridge and The South African Veterinary Foundation, Menlo Park, Republic of South Africa, pp. 348–380
5. Carpenter J W. Exotic Animal Formulary Fourth Edition. 2013.
6. Cattet MRL, Caulkett NA, Boulanger JG, et al. Long-term health effects of capture and handling of grizzly bears in west-central Alberta: implications for animal welfare and good science. Proceedings of The International Bear Association Annual Meeting, Riva Del Garde, September 2005.
7. Caulkett NA, Cantwell SL, Houston DM. A comparison of indirect blood pressure monitoring techniques in the anesthetized cat. Vet Anesthes 1998;27:370–377.
8. Chris Seymour, Tanya Duke. BSAVA Manual of Feline and Canine Anaesthesia and Analgesia. 2nd edition. 2007.
9. Curro TG. Large cat anesthesia. Proceedings of the Western Veterinary Conference, 2002.
10. Fahlman, Å., Loveridge, A., Wenham, C., Foggin, C., Arnemo, J.M. and Nyman, G. (2005). Reversible anaesthesia of free-ranging lions (Panthera leo) in Zimbabwe. Journal of the South African Veterinary Association 76(4), 187-192.
11.  Fahlman, Å., Arnemo, J.M., Swenson, J.E., Pringle, J., Brunberg, S. and Nyman, G. Physiologic evaluation of capture and anesthesia with medetomidine-zolazepam-tiletamine in brown bears (Ursus arctos). (Submitted).
12.  Fahlman, Å., Arnemo, J.M., Persson, J., Segerström, P. and Nyman, G. (2008). Capture and medetomidine-ketamine anaesthesia in free-ranging wolverines (Gulo gulo). Journal of Wildlife Diseases 44(1), 133-142.
13. Fowler M.E., Miller R.E. (edit.) 2003. Zoo and Wild Animal Medicine, Saunders.
14. Galloway DS, Coke RL, Rochat MC, et al. Spinal compression due to atlantal vertebral malformation in two African lion (Panthera leo). J Zoo Wildl Med 2002;33:249–255.
15. Jalanka HH, Roeken BO. The use of medetomidine, medetomidine-combinations, and atipamezole in nondomestic mammals: a review. J Zoo Wildl Med 1990;21:259–282.
16. Kennedy-Stoskopf S. Canidae. In: Fowler ME, Miller RE, eds.Zoo & Wild Animal Medicine, 5th ed. St. Louis: Elsevier Science, 2003:482–491.
17. Ketz-Riley CJ, Ritchey JW, Hoover JP, et al. Immunodeficiency associated with multiple concurrent infections in captive Pallas’ cats (Otocolobus manul). J Zoo Wildl Med2003; 34:239–245
18. Knight A. P. 1980. Xylazine. Journal of American Veterinary Medicine Association 176: 454–455.
19. Kock M.D., Meltzer D., Burroughs R. 2006. Chemical and Physical Restraint of Wild Animals.
20. Kollias GV. Health assessment, medical management, and prerelease conditioning of translocated North American river otters. In: Fowler ME, Miller RE, eds. Zoo and Wild Animal Medicine. Philadelphia: W.B. Saunders, 1999:443–448.
21. Kreeger T J, Amemo JM. 1999. Handbook of Wildlife Chemical Immobilization. Wildlife Pharmaceuticals: Fort Collins, CO.,
22. Kuusela E., Raekallio M., Anttila M., Falck I., Molsa S., Vainio O. Clinical effects and pharmacokinetics of medetoidine and its enantiomers in dogs. J Vet Pharmacol Therap. 23, 15-20, 2000.
23. Langan JN, Schumacher J, Pollock C, et al. Cardiopulmonary and anesthetic effects of medetomidine-ketamine-butorphanol and antagonism with atipamezole in servals (Felis serval). J Zoo Wildl Med 2000;31:329–334.
24. Larsen RS, Loomis MR, Kelly B, et al. Immobilization of red wolves (Canis rufus) using medetomidine and butorphanol. Proc Amer Assoc Zoo Vet 2001:171–175.
25. Murray Fowler (Editor), Zalmir S. Cubas, Biology, Medicine, and Surgery of South American Wild Animals, Wiley-Blackwell, 2008, 536 p.
26. Nielsen L. 1999. Chemical immobilization of Wild and Exotic Animals. Ames, IA: Iowa State University.Pender J., 1971. Dissociative anesthesia. JAMA: 215 p.
27. Samelius G, Lariviere S, Alisauskas RT. Immobilization of arctic foxes with tiletamine hydrochloride and zolazepam hydrochloride (Zoletil ®) Wildlife Society Bulletin. 2003;31:192–196/
28. Sladky, K. K., B. T. Kelly , M. R. Loomis , M. K. Stoskopf, and et all.. Cardiorespiratory effects of four alfa2-adrenoceptor agonist-ketamine combinations in captive red wolves. Journal of the American Veterinary Medical Association 2000, 217: 1366–1371.
29. Wack RF. Felidae. In: Fowler ME, Miller RE, eds. Zoo and Wild Animal Medicine, 5th ed. Philadelphia: W.B. Saunders, 2003:491–500.
30. West G, Heard D, Caulkett N. 2007. Zoo and Wildlife Immobilization and Anesthesia. Blackwell Publishing:
31. Virtanen R. Pharmacological profiles of medetomidine and its antagonist, atipamezole. Acta Vet Scand Suppl. 85:29-37. 1989.

CLINICAL USE MEDETOMIDINE (MEDITIN®) IN ANESTHESIA OF WILD AND ZOO ANIMALS

¹Mikhail V. Alshinetsky, ²Jose A. Hernandez-Blanco, ³Ekaterina Yu.Blidchenko, ²Taras P. Sipko, ²Maria D. Chistopolova, ⁴Mikhail S. Goncharuk^{; 2,6}Anna A. Yachmennikova, ⁵Olga V. Petrova

¹Chief Veterinarian Moscow zoo, 123242 Moscow, B.Gruzinskaya, 1. tel + 7 495 605 73 39.

²Phd, senior researcher of Laboratory of Behavior and Behavioral Ecology of Mammals A.N. Severtsov Institute of Ecology and Evolution, Russian Academy of Sciences, Moscow, Russia, Leninsky, 33, room 19.

³ Veterinarian PROO “Center Tiger”

⁴ Veterinarian “Lazovsky Nature Reserve”

⁵ DVM, API-SAN LLC, 7 (495) 580-77-13, ext. 1193, e-mail: info@apicenna.ru, 143985 Moscow Region, Balashikha, Poltavskoe highway, possession 4, address for correspondence: 143980, Moscow Region, Zheleznodorozhny, st. Proletarskaya, 2, 599

⁶Researcher «Kronotsky Nature Reserve», Ryabikova Street, 48, Yelizovo, Kamchatka region, 684000

ABSTRACT

Medetomidine, alpha2-agonist, has the official recommendations for use by the wild mammalian animal and bird species in immobilization and anesthesia goals in Europe, the USA and Canada. However, in Russia this drug has not passed the officially approved approbation as such of a means for wild animal species. In this study was show the possibility of using medetomidine, as well as its safety in wild and zoo animals during anesthesia. Effective doses of medetomidine was - 20-120 mkg/kg (depending on the type of animal). The doses were generally comparable with international recommendations. The first signs of sedation, against medetomidine, occurred in 6 to 25 minutes, and recovery in animals after administration of antipamezole was 5 to 45 minutes after administration (depending on the type of animal). All animals have a good tolerated induction during of immobilization, and that not lethal outcomes observed.

Материл опубликован в журнале ВАК «Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии» № 3 (2018) с. 136-143